原型物種
來源
模式動物品系
實驗分組
實驗周期
建模方法
應用
模型評價
肝臟缺血損傷評分:
0分:無肝細胞損傷
1分:輕度損傷,特點為細胞質空泡化,病灶核固縮
2分:中度損傷,血竇膨脹,細胞溶質空泡化,細胞邊界模糊
3分:中度到重度損傷,凝固性壞死,大量血竇膨脹,紅細胞滲出到肝鎖,嗜伊紅細胞增多,中性白細胞著邊(附著于血管壁)
4分:嚴重壞死,失去肝臟結構,肝索崩解,出血,嗜中性粒細胞滲入
組織病理學
取肝左葉組織1.5cm×1cm×0.2cm于4%多聚甲醛溶液中固定24h后脫水,包埋,進行石蠟切片后行HE染色,tunel染色。作壞死評分。肝小葉結構嚴重破壞,網狀纖維支架塌陷,肝細胞壞死,空泡變樣,肝細胞索、肝竇充血腫脹,邊界不清,周圍有炎性細胞浸潤。
生化指標檢測:分別檢測術后0h、3h、6h、12h、24h及72h小鼠鼠血清中ALT(谷丙轉氨酶)、AST(天門冬氨酸氨基轉移酶)的水平,γ-谷氨酰基轉移酶(GGT),總膽紅素(T-Bil),直接膽紅素(D-Bil),間接膽紅素(I-Bil),總膽汁酸(TBA) 。
流式檢測:
1. 樣本前處理
①剪碎:將消化液中的組織充分剪碎
②加入消化液:每個肝組織加入5ml消化液
③消化:37℃消化 45min
④ 中止:消化完的組織加入終濃度為10%FBS的1640 10ml,終止酶反應。
⑤過濾:將組織懸液經200目濾網過濾
⑥洗滌:收集單細胞懸液至于50ml EP管中,2000rpm 離心10min。
⑦疊層:用小鼠淋巴細胞分離液疊層處理
⑧ 收細胞:吸取位于中間的透明細胞層,FACs buffer 離心洗滌細胞一次。
2. 流式染色:
①FcR封閉:加入1% FcR 阻斷劑(anti CD16/32 antibody),每樣本100ul。4℃ 孵育30min,FACs buffer 離心洗滌。
②樣本表面抗體工作液:
配置混合抗體工作液,每樣本100ul;
加入抗體工作液后,4℃ 孵育避光30min,FACs buffer 離心洗滌。
PerCP anti-mouse CD11b
PE/Cy7 anti-mouse Ly-6G
FITC anti-mouse CD45
PE anti-mouse F4/80
3.樣本胞內染色:
加入固定破膜液50ul,用槍頭輕柔吹打重懸,室溫避光45min。完成后,加入1x perm/wash buffer洗滌。
4.染色完成,重懸細胞:
樣本染色完成(每樣本使用200ul FACs buffer重懸),4℃ 避光保存,待上機。
5.流式上機:
上機樣本,收集總數目50萬/細胞。
應用SPSS軟件進行統計分析,計量資料以均數±標準差(x ±s)表示,采用t檢驗,組間比較采用單因素方差分析,P<0.05表示有顯
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