1. 觀察各組大鼠的活動量、毛發、食量、呼吸、體重等。每周給食前1h稱重，觀察體重的變化。
2. RT-qPCR檢測
收集大鼠PBMC和肺組織，提取RNA，利用RT-PCR檢測Foxp3、RORγT的表達。
3. Western blot檢測
收集大鼠PBMC和肺組織，提取蛋白，采用western-blot檢測TAZ水平。
4. 流式細胞檢測外周血T淋巴細胞亞群
收集各組大鼠腹主動脈血2ml左右，利用大鼠外周血淋巴細胞分離液提取外周血單個核細胞（PBMC）細胞懸液。
（1）檢測Th17時，細胞懸液加入佛波酯（50ng/ml）、離子霉素（1μg/ml）和莫能菌素（2μmol/L），37℃、5%CO2培養箱終培養6h后，反復洗滌3次后100μL PBS重懸，然后加入CD4單克隆抗體10μL，混勻后4℃避光孵育30min，洗滌、固定、破膜，再加入IL-17單克隆抗體10μL，4℃避光孵育20min，反復洗滌后PBS重懸為500μL/管，樣品置流式細胞儀檢測CD4+IL-17+細胞占CD4+T細胞的比例。
（2）檢測Treg細胞時，細胞懸液先加入CD4、CD25單克隆抗體各10μl，混勻后4℃避光孵育30min，洗滌、固定、破膜，再加入FoxP3單克隆抗體10μL，4℃避光孵育20min，反復洗滌后PBS重懸為500μL/管，樣品置流式細胞儀檢測CD4+CD25+FoxP3+細胞占CD4+T細胞的比例。

HE染色：右肺葉組織固定包埋切片，HE染色，觀察肺組織病理變化情況。

ELISA檢測：
檢測血清和支氣管肺泡灌洗液中的IL-17和IL-10水平。
支氣管肺泡灌洗液（BALF）抽取方法：大鼠取血后，開胸，分離縱膈，注射器抽取3ml生理鹽水從氣管插管推入肺中，每次反復灌洗3次后抽出灌洗液，肺泡灌洗液以4℃ 3000r/min離心15min，取上清。
血清提取方法：將收集于血清分離管中的全血標本在室溫放置 2 小時或 4oC 過夜，然后 1,000×g 離心 20 分鐘，取上清即可，將上清置于-20oC 或-80oC 保存，避免反復凍融。

應用SPSS軟件進行統計分析，計量資料以均數±標準差（x ±ｓ）表示，采用ｔ檢驗，組間比較采用單因素方差分析，P<0.05表示有顯